1、原理： 

（1）計算細胞數目可用血球計數盤或是Coultercounter粒子計數器自動計數。 
（2）血球計數盤一般有二個chambers，每個chamber中細刻9個1mm2大正方形，其中4個角落之正方形再細刻16個小格，深度均為0.1mm。當chamber上方蓋上蓋玻片后，每個大正方形之體積為1mm2×0.1mm=1.0x10-4ml。使用時，計數每個大正方形內之細胞數目，乘以稀釋倍數，再乘以104，即為每ml中之細胞數目。 
（3）存活測試之步驟為dyeexclusion，利用染料會滲入死細胞中而呈色，而活細胞因細胞膜完整，染料無法滲入而不會呈色。一般使用藍色之trypan blue染料，如果細胞不易吸收trypan blue，則用紅色之Erythrosin bluish。 

2、材料： 

0.4%w/v trypan blue（GibcoBRL15250-061）；Erythosin bluish stain；取0.1gram Erythrosin bluish（SigmaE-9259）及0.05gram preservative methyl paraben（SigmaH-3647）溶于100mlCa++/Mg++freesaline；血球計數盤及蓋玻片（Hemocytometerandcoverslip）；計數器（counter）；低倍倒立顯微鏡；粒子計數器（Coultercounter,CoulterElectronics）。

3、步驟： 

（1）取50μl細胞懸浮液與50μl trypan blue（orErythrosinbluish）等體積混合均勻于1.5ml小離心管中。
（2）取少許混合液（約15μl）自血球計數盤chamber上方凹槽加入，蓋上蓋玻片，于100倍倒立顯微鏡下觀察，活細胞不染色，死細胞則為藍色（或紅色-Erythrosin bluish）。 
（3）計數四個大方格之細胞總數，再除4，乘以稀釋倍數（至少乘以2，因與trypanblue等體積混合），zui后乘以104，即為每ml中細胞懸浮液之細胞數。若細胞位于線上，只計上線與右線之細胞（或計下線與左線之細胞）。 

注：4大格細胞總數×稀釋倍數×104/4=細胞數/ml；每一大格的體積=0.1cm×0.1cm×0.01cm=10-4ml 

4、范例： 

T75 monolayer culture制成10ml細胞懸浮液，取0.1ml溶液與0.1ml trypan blue混合均勻于試管中，取少許混合液加入血球計數盤，計數四大方格內之細胞數目。 
活細胞數/方格：55，62，49，59；死細胞數/方格：5，3，4，6；細胞總數=243 
平均細胞數/方格=60.75；稀釋倍數=2 
細胞數/ml：60.75×104×2（稀釋倍數）=1.22×106
細胞數/flask（10ml）：1.22×106×10ml=12.2×106 
存活率：225/243﹦92.6%